文章信息
- 万璐颖,邓军,张凌,项晓军,陈俊,熊建萍. 2015.
- WAN Luying, DENG Jun, ZHANG Ling, XIANG Xiaojun, CHEN Jun, XIONG Jianping. 2015.
- 微小RNA-320在肿瘤中的研究进展
- Recent Advance on MicroRNA-320 in Tumors
- 肿瘤防治研究, 2015, 42(03): 311-314
- Cancer Research on Prevention and Treatment, 2015, 42(03): 311-314
- http://www.zlfzyj.com/CN/10.3971/j.issn.1000-8578.2015.03.021
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文章历史
- 收稿日期:2014-04-01
- 修回日期:2014-08-04
miRNA是一类长度约18~25个核苷酸的小分子 非编码RNA。自Lee等[1]在秀丽隐杆线虫中发现首 个microRNA lin-4后,现已在人类中发现约1 800多 个前体miRNA及2 500多个成熟miRNA[2]。miRNA 通过部分或完全互补结合于mRNA的3’非翻译区 (3’UTR),导致其翻译抑制或降解,从而在转录 后水平调控基因表达。miRNA表达水平的异常与 多种疾病相关,其中与肿瘤的关系尤为密切。近年 来,研究者在miR-320与肿瘤发生领域取得了较大 进展,发现其在多种肿瘤细胞中表达下调,并作为 抑癌基因参与肿瘤的发生、转移、耐药等过程。本 文将对miR-320在肿瘤中的研究进展进行阐述。 1 miR-320基因定位及其在肿瘤中的表达
miR-320家族成员包括miR-320a、miR-320b、 miR-320c、miR-320d、miR-320e(http://www. mirbase.org),分别定位于人类染色体8p21.3、 1、18、13q14.11、19q13.32上。研究显示, miR-320的表达在肿瘤组织及正常组织中存在显 著差异。Sun等[3]利用实时定量PCR(quantitative reverse transcription PCR,QRT-PCR)技术在对3种 结肠癌细胞系及40例结直肠癌组织进行检测时, 发现miR-320a表达显著低于GES细胞系及邻近正常 组织,提示miR-320a表达下调可能是结直肠癌的 始动因素。此外,伴有远处转移的结直肠癌组织 较不伴有远处转移的癌组织,以及肝转移癌较原 发癌,miR-320a的表达同样下调,提示miR-320a 在肿瘤的进展期具有抑制肿瘤转移的作用[3, 4]。近 年来,在胆管癌[5, 6]、口腔鳞癌[7]、乳腺癌[8]、肺鳞 癌[9]等肿瘤中均发现miR-320表达下调,然而,在 视网膜母细胞瘤[10]、浆液性卵巢癌[11]、恶性转化 的支气管上皮细胞[12]中miR-320表达较正常组织细胞明显上调。以上研究结果提示,miR-320家族在 肿瘤中的异常表达及功能作用可能与组织类型密 切相关。肿瘤细胞内miR-320拷贝数的改变使下游 靶基因的表达异常,并最终影响肿瘤的增殖、凋 亡、迁移、侵袭等生物学行为,见表 1。因此,深 入探究miR-320在不同肿瘤中的作用有助于阐明肿 瘤的病因学及分子病理学机制。
一系列的研究表明miR-320参与了肿瘤细胞增 殖的调控。Sun等[3]发现miR-320能够抑制结肠癌 细胞中β-catenin表达,导致Wnt通路下游c-myc、 cyclinD1、survivin蛋白水平降低,在细胞层面证 明了miR-320可抑制G1期到S期的转换并抑制细 胞增殖能力。以上调控作用也存在于肿瘤干细胞 中,研究者在体外及体内实验中通过上调miR-320 减弱了前列腺癌干细胞的肿瘤形成能力,同时, 全基因组分析显示Wnt/β-catenin通路下游蛋白及干 细胞标志物(包括CD44、Nanog、Nestin)表达明 显下降,说明miR-320可通过抑制肿瘤干细胞特性 起抑癌作用[13]。
转铁蛋白受体1 (CD7 1 ,TfR- 1 ) 是一种 介导细胞铁摄取的跨膜糖蛋白,其表达水平 与细胞增殖状态直接相关[14]。Schaar等[15]利用 诱导分化剂12-氧-十四烷酰佛波醇-13-乙酯酸 (12-O-tetradecanoylphorbol-13-acetate,TPA)诱 导人早幼粒白血病细胞HL-60分化成单核细胞表型 后,CD71表达降低而miR-320表达升高。荧光素 酶报告基因实验证明了CD71是miR-320的靶基因 之一,表明在肿瘤细胞分化成熟过程中miR-320可 通过靶向CD71降低细胞的增殖能力。脂肪酸合酶 (fatty acid synthase,FASN)在肿瘤增殖、转移过 程中起关键作用,最新的一项研究显示骨肉瘤细 胞中miR-320可靶向调控FASN表达,抑制细胞G1/ S期转换,若同时上调FASN水平则可拮抗miR-320 的抗增殖效应,表明FASN介导了miR-320对肿瘤 细胞增殖的调控[16]。
与以上研究不同,Duan等[17]在用B[a] P (benzo[a]pyrene)恶性转化的小鼠支气管上皮细 胞中却检测到miR-320表达的升高,并通过靶向抑 制细胞周期蛋白激酶Cdk6,使细胞阻滞于G1期并 抑制细胞增殖能力。研究者认为这可能是化学毒 性物质诱导了miR-320表达的改变,使细胞周期停 滞并修复损伤以避免致瘤性突变累积的结果。 3 miR-320与肿瘤细胞侵袭及转移
Zhang等[18]通过对62例结肠癌患者的临床病 理特征分析显示低水平的miR-320a与肝、腹膜转 移率高、临床分期晚显著相关,提示miR-320在 肿瘤进展期具有抑制细胞侵袭、转移的作用。进 一步的研究发现结直肠癌组织及细胞系中低水平 的miR-320a可促进细胞迁移/侵袭,其作用机制 在于miR-320a对Ras相关的C3肉毒素底物1(rasrelated C3 botulinumtoxin substrate1,Rac1)起负性 调控作用[4]。Rac1参与调节细胞骨架结构、细胞间 黏附及细胞基质降解,与肿瘤的侵袭、转移密切相 关[19]。miR-320直接靶向Rac1可抑制肿瘤细胞的增 殖、侵袭及上皮间质转化(epithelial mesenchymal transition,EMT)过程。
Wu等[7]利用基因芯片及实时定量PCR技术在口腔鳞癌(oral squamous cell carcinoma,OSCC) 中寻找癌基因时发现miR-320在OSCC细胞系中 的表达明显低于正常组织细胞。之后,结合生 物信息学等方法发现神经菌毛素-1(neuropilin 1, NRP-1)是miR-320的直接靶基因。NRP-1是一 种能促进血管内皮生长因子(vascular endothelial growth factor,VEGF)与血管内皮生长因子受 体-2(vascular endothelial growth factor receptor-2, VEGFR-2)等多种配体-受体的结合的细胞膜表 面辅助受体,参与肿瘤血管生成及侵袭转移。 miR-320表达下调时,对NRP-1抑制作用减弱,进 而促进细胞迁移及血管生成能力。
近年来,肿瘤间质在肿瘤演进中的作用越来 越受到重视,其中间质成纤维细胞在肿瘤转移过 程中起到重要的调控作用。Trimboli等[20]研究发现 小鼠乳腺管间质成纤维细胞中PTEN( phosphatase and tensin homolog deleted on chromosome ten )的 缺失,使下游转录因子Ets2募集并与血管生成等相 关促瘤基因启动子结合,从而促进肿瘤生长及演 进。深入研究后发现,miR-320介导了上述PTEN 的抑瘤效应,即乳腺癌基质成纤维细胞中PTEN缺 失,使其对JNK1及JNK2抑制作用减弱,导致下 游miR-320表达水平降低,而其靶基因如转录因子 Ets2、基质金属蛋白酶MMP9、EMILIN2等表达升 高,最终促进上皮细胞迁移和血管生成[21]。因此 认为miR-320在成纤维细胞PTEN调控的微环境重 组及延缓肿瘤进展中起关键作用。
然而,在肝细胞癌中的研究表明,miR-320a/ c/d可降低具有抑制肿瘤细胞转移作用的鸟苷酸 结合蛋白G(i)α-1亚基(guanine nucleotide-binding protein G(i),α-1 subunit,GNAI1)的表达,而促进 细胞的迁移、侵袭[22]。产生这种现象的原因可能 是不同肿瘤中miR-320下游靶基因及其信号通路的 功能不同导致。 4 miR-320与肿瘤细胞凋亡及耐药
正常细胞的增殖与凋亡处于一种平衡状态, 两者相互协调以维持内环境的稳态。当细胞凋亡 机制受损时,将导致突变细胞无法清除,增加肿 瘤发生的风险。Caspase蛋白的级联反应过程是细 胞凋亡的中心环节,其中B细胞淋巴瘤/白血病-2 (B cell lymphoma/Leukelia-2,Bcl-2)家族、IAPs (inhibitors of apoptosis protein)家族是主要的调 控蛋白。一方面,miR-320可靶向抑制Bcl-2家族 抗凋亡基因Mcl-1(myeloid cell leukemia-1)的表 达促进细胞凋亡。Chen等[6]在胆管癌细胞中发现 miR-320对Mcl-1的靶向抑制作用减弱可导致细胞 恶性转化及对5-Fu等化疗药物抵抗;Noto等[23]在 对致瘤性CagA+幽门螺杆菌(helicobacter pylori, HP) 感染后胃癌细胞的研究中则直接证明了 miR-320表达下调引起的抗凋亡效应。另一方面, miR-320a也可通过调控IAPs家族成员Survivin起抗 凋亡作用。Diakos等[24]在融合蛋白TEL-AML1阳 性的白血病细胞中证实,起负性转录因子作用的 TEL-AML1蛋白结合于miR-320a基因启动子部位 使其表达沉默,miR-320a对靶基因Survivin抑制作 用减弱,进而产生明显的抗细胞凋亡作用。
化疗是治疗恶性肿瘤的主要手段之一,而肿 瘤细胞对化疗药物的抵抗是导致化疗失败的重要 原因。越来越多的研究表明miRNA表达水平的异 常可导致化疗耐药。近年来,利用基因芯片技术, 研究者在吉西他滨化疗的胆管癌细胞[5]、顺铂或 5-Fu化疗的食管癌细胞[25]和耐吉西他滨的胰腺癌细 胞系[26]中均发现miR-320表达上调,此外,胃肠道 间质瘤miR-320a表达降低与伊马替尼抵抗相关, 提示miR-320参与肿瘤化疗耐药形成[27]。Salendo 等[28]通过外源性转染miR-320a,证明miR-320可增 加结直肠癌细胞对术前化放疗及放疗的敏感度。 目前关于miR-320与化疗抵抗的研究不多,多数结 果仅初步提示miR-320可改善肿瘤细胞对化疗药物 的抵抗,尚需更多的实验在分子及动物水平证明 miR-320与化疗耐药的关系。 5 结语与展望
miR-320表达谱在肿瘤组织与正常组织中存 在显著差异,并且不同肿瘤中的表达水平也不相 同,体现了miR-320对肿瘤调控的复杂性。在对 miR-320与肿瘤关系的研究中发现,miR-320在肿 瘤转移灶中的表达水平低于原发灶,miR-320低表 达的肿瘤转移率高,患者预后差。提示通过研究 影响miR-320表达的各水平因素,明确其对下游靶 基因的具体调控机制,即有可能将miR-320及其调 控的信号通路作为干预靶标,为临床肿瘤治疗提 供新的靶点。当前有关miR-320还有许多问题尚不 明确,进一步探究其在肿瘤发生发展中的调节机 制,将对肿瘤的诊治及预后发挥重要作用。
| [1] | Lee RC, Feinbaum RL, Ambros V. The C. elegans heterochronicgene lin-4 encodes small RNAs with antisense complementarityto lin-14[J]. Cell, 1993, 5(5): 843-54. |
| [2] | Cheng Q, Yi B, Wang A, et al. Exploring and exploiting thefundamental role of microRNAs in tumor pathogenesis[J]. OncoTargets Ther, 2013, 6: 1675-84. |
| [3] | Sun JY, Huang Y, Li JP, et al. MicroRNA-320a suppresses humancolon cancer cell proliferation by directly targeting β-catenin[J].Biochem Biophys Res Commun, 2012, 420(4): 787-92. |
| [4] | Zhao H, Dong T, Zhou H, et al. miR-320a suppresses colorectalcancer progression by targeting Rac1[J]. Carcinogenesis, 2014,35(4): 886-95. |
| [5] | Meng F, Henson R, Lang M, et al. Involvement of humanmicro-RNA in growth and response to chemotherapy in humancholangiocarcinoma cell lines[J]. Gastroenterology, 2006, 130(7):2113-29. |
| [6] | Chen L, Yan HX, Yang W, et al. The role of microRNA expressionpattern in human intrahepatic cholangiocarcinoma[J]. J Hepatol,2009, 50(2): 358-69. |
| [7] | Wu YY, Chen YL, Jao YC, et al. miR-320 regulates tumorangiogenesis driven by vascular endothelial cells in oral cancer bysilencing neuropilin 1[J]. Angiogenesis, 2014, 17(1): 247-60. |
| [8] | Yan LX, Huang XF, Shao Q, et al. MicroRNA miR-21overexpression in human breast cancer is associated withadvanced clinical stage, lymph node metastasis and patient poorprognosis[J]. RNA, 2008, 14(11): 2348-60. |
| [9] | Gao W, Shen H, Liu L, et al. miR-21 overexpression in humanprimary squamous cell lung carcinoma is associated with poorpatient prognosis[J]. J Cancer Res Clin Oncol, 2011, 137(4):557-66. |
| [10] | Zhao JJ, Yang J, Lin J, et al. Identification of miRNAs associatedwith tumorigenesis of retinoblastoma by miRNA microarrayanalysis[J]. Childs Nerv Syst, 2009, 25(1): 13-20. |
| [11] | Li X, Lu Y, Chen Y, et al. MicroRNA profile of paclitaxel-resistantserous ovarian carcinoma based on formalin-fixed paraffinembeddedsamples[J]. BMC Cancer, 2013, 13: 216. |
| [12] | Shen YL, Jiang YG, Greenlee AR, et al. MicroRNA expressionprofiles and miR-10a target in anti-benzo[a] pyrene-7, 8-diol-9,10-epoxide-transformed human 16HBE cells[J]. Biomed EnvironSci, 2009, 22(1): 14-21. |
| [13] | Hsieh IS, Chang KC, Tsai YT, et al. MicroRNA-320 suppressesthe stem cell-like characteristics of prostate cancer cells bydownregulating the Wnt/β-catenin signaling pathway[J].Carcinogenesis, 2013, 34(3): 530-8. |
| [14] | Crepin R, Goenaga AL, Jullienne B, et al. Development of humansingle-chain antibodies to the transferrin receptor that effectivelyantagonize the growth of leukemias and lymphomas[J]. CancerRes, 2010, 70(13): 5497-506. |
| [15] | Schaar DG, Medina DJ, Moore DF, et al. miR-320 targetstransferrin receptor 1 (CD71) and inhibits cell proliferation[J].Exp Hematol, 2009, 37(2): 245-55. |
| [16] | Cheng C, Chen ZQ, Shi XT. MicroRNA-320 inhibits osteosarcomacells proliferation by directly targeting fatty acid synthase[J].Tumour Biol, 2014, 35(5): 4177-83. |
| [17] | Duan H, Jiang Y, Zhang H, et al. miR-320 and miR-494 affect cellcycles of primary murine bronchial epithelial cells exposed tobenzo[a]pyrene[J]. Toxicol In Vitro, 2010, 24(3): 928-35. |
| [18] | Zhang Y, He X, Liu Y, et al. MicroRNA-320a inhibits tumorinvasion by targeting neuropilin 1 and is associated with livermetastasis in colorectal cancer[J]. Oncol Rep, 2012, 27(3):685-94. |
| [19] | Morimura S, Takahashi K. Rac1 and Stathmin but Not EB1 arerequired for invasion of breast cancer cells in response to IGFI[J]. Int J Cell Biol, 2011, 2011: 615912. |
| [20] | Trimboli AJ, Cantemir-Stone CZ, Li F, et al. PTEN in stromalfibroblasts suppresses mammary epithelial tumours[J]. Nature,2009, 461(7267): 1084-91. |
| [21] | Bronisz A, Godlewski J, Wallace JA, et al. Reprogramming ofthe tumour microenvironment by stromal PTEN-regulated miR-320[J]. Nat Cell Biol, 2011, 14(2): 159-67. |
| [22] | Yao J, Liang LH, Zhang Y, et al. GNAI1 suppresses tumor cellmigration and invasion and is post-transcriptionally regulated bymir-320a/c/d in hepatocellular carcinoma[J]. Cancer Biol Med,2012, 9(4): 234-41. |
| [23] | Noto JM, Piazuelo MB, Chaturvedi R, et al. Strain-specificsuppression of microRNA-320 by carcinogenic Helicobacterpylori promotes expression of the anti-apoptotic protein, Mcl-1[J].Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol, 2013, 305(11): G786-96. |
| [24] | Diakos C, Zhong S, Xiao Y, et al. TEL-AML1 regulation ofsurvivin and apoptosis via miRNA-494 and miRNA-320a[J].Blood, 2010, 116(23): 4885-93. |
| [25] | Hummel R, Wang T, Watson DI, et al. Chemotherapy-inducedmodification of microRNA expression in esophageal cancer[J].Oncol Rep, 2011, 26(4): 1011-7. |
| [26] | Iwagami Y, Eguchi H, Nagano H, et al. miR-320c regulatesgemcitabine-resistance in pancreatic cancer via SMARCC1[J]. BrJ Cancer, 2013, 109(2): 502-11. |
| [27] | Gao X, Shen K, Wang C, et al. miR-320a downregulation isassociated with imatinib resistance in gastrointestinal stromaltumors[J]. Acta Biochim Biophys Sin (Shanghai), 2014, 46(1):72-5. |
| [28] | Salendo J, Spitzner M, Kramer F, et al. Identification of amicroRNA expression signature for chemoradiosensitivity ofcolorectal cancer cells, involving miRNAs-320a, -224, -132 andlet7g[J]. Radiother Oncol, 2013, 108(3): 451-7. |
2015, Vol. 42



